Вопрос: пластиковые пробирки выдержат автоклавирование при 70-90 градусах? А может быть и выше выдержат? Пластик - или полиэтилен или(даже скорее) полипропилен. Точнее сказать не могу - маркировки нет.

Сшитый выдержит на ура, обычный, скорее всего, деформируется.

Взялся я за интересное дело: выделение дейнококков из окружающей среды. В связи с этим возникло несколько вопросов.

Первый: все ли они кислотоустойчивы? До какого значения pH они могут спокойно расти?

Второй: если структура клеточной стенки у них как у грамотрицательных бактерий, но толщина клеточной стенки при этом достаточно мала, чтобы они окрашивались как грамположительные - будут ли на них действовать антибиотики, действующие на "традиционных"(типа клостридий, бацилл) грамположительных бактерий(типа бензилпенициллина, феноксиметилпенициллина, линкозамина)?

И третий: хватит ли 3-6 минут облучения стоматологическим рентгеновским аппаратом, чтобы убить всё, кроме собственно дейнококков?

Заранее спасибо за помощь.

1) Точно указать рН не могу, но дейнококки достаточно кислотоустойчивы (полиэкстремофил).
2) На счет антибиотиков информации не нашел.
3) Обычно используют гамма-излучение или нейтронное. Первое более безопасно.

Если я в 10 мл среды Лурия-Бертани внесу каплю конц. серной кислоты - они не сдохнут?

Доступно и гамма и нейтронное, но в универе(ждать до понедельника, чтобы с физиками договориться). А посев я сделал ещё вчера. Завтра смогу облучить рентгеном в стоматологии, где у одной из моих бывших девушек папа работает.

И ещё: читал, что B. anthracis в жидких средах растёт в виде ватообразных комков у дна, с трудом разбивающихся при встряхивании. С трудом - это как именно? Мои при первом встряхивании отделили маленькие кусочки, а при третьем вовсю "пылили". *Посев для выделения дейнококков делался с коровьих волос(с морды бычка, пасущегося под палящим солнцем, наблюдается эта "вата") и и кусочка высохшего под солнцем коровьего кала("вата" не наблюдается, появляются окрашенные оранжево-красные и жёлтые колонии). Посевы брались с наиболее облучаемых солнечным УФ мест, т.к. УФ убивает большую част не радиационноустойчивой микрофлоры.

Дополнение: если это и было чего-то опасное - оно наверняка сдохло в серной кислоте. В отличии от дейнококков и микобактерий. Микобактерии. впрочем, сдохнут под рентгеном.

На форму колоний особо полагаться не стоит, нужно микроскопическое исследование.
Попробуйте их окрасить (предельно осторожно). Если увидите "ж/д составы"
делайте ноги значит и впрямь поймали опасного микроба.

Ну если это действительно сибирская язва, то в кислоте она наверняка не погибла. Обычно трупы животных раньше засыпали каустической содой. От УФ гибнут как минимум через 2 недели. Про рентген не знаю.
-----------------
Рентген не может дать гарантии полной стерилизации поэтому желательно гамма-излучение.
А кстати если не секрет чем это у Вас там физики занимаются? Ядерщики или просто физические методы исследования?

Полупроводниками в основном. У нас есть несколько источников на плутоние, америцие, стронцие и, по-моему цезие и кобальте - для демонстрационных целей. Я с ними работал, когда определял радиоактивность того, что мне в ранец сунули. Оказался СПД с радием 228.

Вопрос: как готовятся р-ры эозина для разных применений(окраска белков, клеток, флюоресцентной микроскопии)? Спасибо.

Есть хорошая книга
Фрайштат Д.М. Реактивы и препараты для микроскопии
но в свободном доступе ее, увы, не встречал. Попробуйте найти бумажный вариант в доступных вам научных библиотеках.

Много где встречал: 1% р-р водный или спиртовой (70%спирт). Для анатомических целей (ботаника)- 2% р-р эозина в 1% р-ре аммиака.
Книг у меня много по данной тематике, но практически все по ботанике.

А в ботанике он как используется? Для окраски срезов? *Ядра, насколько я понимаю красные получаются, а цитоплазма - розоватая?

Да, для срезов. Окрашивает в розовый цвет цитоплазму и белки клеток. Эозин из так называемой группы цитоплазматических красителей или кислых. Гематоскилин же, например, - основный, ядерный краситель.

А Судан III как правильно готовить к употреблению? В чём и как растворять?

В гистологии обычно применяют такую рецептуру:
В 100 мл горячего 70% этилового спирта засыпают 0,2-0,3 г порошка судана III, несколько раз взбалтывают и ставят в термостат (при 58°С) на 3-5 часов, затем охлаждают и фильтруют.
В микробиологии поступают проще:
0,1 г судана III в 20 мл 95%-ного спирта или в концентрированной молочной кислоте. Перед употреблением раствор фильтруют.

Также готовят раствор судана III или IV на спирто-глицериновой смеси. Молочная кислота- хороший просветлитель объектов.

upsiderium, Антон: спасибо! А спирт с глицерином в каких пропорциях смешивают?

Конкретно для Суданов : 20 мл спирта+ 10 мл глицерина.
Была у меня книга (учебное пособие какого-то университета,) по красителям и фиксаторам (скачал в инете), на обложке там изображена сувойка (Vorticella), и она называлась то ли "красители и фиксаторы, то ли красители". Может быть,её кто-то видел, у себя найти не могу. Там есть информация по приготовлению и методики окрашивания и фиксации.

Этот?
viewtopic.php?p=63547#p63547

Он самый. Спасибо!